其他(巨磁阻(GMR)生物传感器) 2010

GMR biosensor arrays: correction techniques for reproducibility and enhanced sensitivity.

Biosensors & bioelectronics Hall DA, Gaster RS, Osterfeld SJ, Murmann B, Wang SX
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组成图示

GMR biosensor arrays: correction tech... 传感器构成示意图

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传感器类型

其他(巨磁阻(GMR)生物传感器)

检测对象

蛋白质(proteins)、核酸(nucleic acids);样品基质:未明确(体外生物样品/缓冲液)

检测原理

传感器表面固定捕获抗体,选择性捕获目标蛋白或核酸;随后磁性纳米颗粒(MNP)标记的检测抗体与分析物结合,使传感器上方局部磁场发生变化。GMR自旋阀传感器的磁阻随表面结合MNP数量改变,产生微小电阻变化。系统采用双调制方案,对磁场和激励电压分别以ff和fc调制,将电阻分量与磁阻分量分离为载波(CT)和边频(ST),并通过MR=(CT+2ST)/(CT−2ST)−1计算磁阻。结合动态工作点、MR校准、实时温度校正和自适应滤波,可补偿工艺偏差、磁场不均匀、温度漂移和噪声,使MR变化经校准曲线转换为分析物浓度。

检测灵敏度

LOD: 5 fM(原文报告为可定量且可重复区分非特异结合/阴性对照的最低浓度,未使用生物放大);SNR: 8(5 fM时)

效应效果

校正技术显著提高了GMR阵列的重复性与抗干扰能力。MR校准使1 Oe磁场步进的响应标准差降低5倍(未校正平均179 µV、标准差6.1 µV)。温度校正可实时消除冷/热溶液引起的温度漂移,无需温控。自适应滤波将125 fM蛋白检测的SNR从略高于15提高到30以上,使饱和幅度可稳定判断。跨5片晶圆32个芯片、每片64个传感器的0.5 Oe模拟响应中,平均响应保持103.40至103.44 µV,标准差由3 µV降至0.87 µV,重复性提高3.4倍。作者称这些校正使蛋白检测LOD提高3个数量级以上,校准曲线可连续使用数月,适用于体外诊断和更大阵列。

传感器的构成

  • 换能器层:GMR自旋阀传感器(GMR spin-valve sensor),8×8可独立寻址阵列,感应表面磁性纳米颗粒引起的局部磁场变化并转换为磁阻/电阻变化
  • 识别元件:捕获抗体(capture antibody),固定于传感器表面,选择性捕获目标蛋白或核酸
  • 信号标记物:磁性纳米颗粒标记检测抗体(MNP-labeled detection antibody),与分析物结合后在传感器上方引入局部磁场变化
  • 信号读出电路:跨阻放大器(TIA)与仪表放大器(IA),将GMR传感器微小电阻变化转换为电压信号、抑制载波并提供增益
  • 调制与校正激励:双调制磁场与电压(tickling field, fc/ff),分离电阻与磁阻分量并避开闪烁噪声

中文摘要

巨磁阻生物传感器在生物医学应用中具有检测磁性标记生物分子的高潜力。磁感应不受酶联免疫吸附试验等光学检测模式高背景干扰影响,因而具备更高灵敏度。然而,为充分发挥其潜力并补偿温度依赖等非理想因素,数字校正与校准技术不仅有用而且必要。本文针对GMR自旋阀生物传感器阵列,提出动态工作点设置、磁阻校准、实时温度校正和自适应滤波等校正方法,用于补偿工艺偏差、前端电子噪声、温度变化及磁场不均匀性。通过双调制方案将磁性纳米颗粒信号从传感器和电子学闪烁噪声中分离,利用载波与边频计算磁阻,并通过反馈调节“tickling field”优化灵敏度。温度校正利用同一传感器自身载波信号感知相对温度变化,结合温度系数关系对边频进行背景校正,使传感器无需精确温控即可温度独立。结果表明,数字校正使系统重复性提高3倍以上,传感器阵列在温度扰动下保持稳定,为定量生物分子重组检测提供高灵敏、可重复平台。

英文摘要

Giant magnetoresistive biosensors possess great potential in biomedical applications for quantitatively detecting magnetically tagged biomolecules. Magnetic sensing does not suffer from the high background levels found in optical sensing modalities such as the enzyme linked immunosorbent assay translating into a technology with higher sensitivity. However, to reveal the full potential of these sensors and compensate for non-idealities such as temperature dependence, digital correction and calibration techniques are not only useful but imperative. Using these calibration techniques to correct for process variations and dynamic changes in the sensing environment (such as temperature and magnetic field), we are able to obtain extremely sensitive and, more importantly, reproducible results for quantifiable biomolecular reorganization. The reproducibility of the system was improved by over 3 x using digital correction techniques and the sensors are made temperature independent by using a novel background correction technique.