其他(光学干涉生物传感器) 2011

Prostate specific antigen detection in patient sera by fluorescence-free BioCD protein array.

Biosensors & bioelectronics Wang X, Zhao M, Nolte DD, Ratliff TL
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组成图示

Prostate specific antigen detection i... 传感器构成示意图

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传感器类型

其他(光学干涉生物传感器)

检测对象

前列腺特异性抗原(PSA, prostate specific antigen);样品基质:前列腺癌患者血清、PSA加标女性血清

检测原理

BioCD以120 nm SiO2/Si为基底,在488 nm s偏振光、30°入射下工作。蛋白层改变界面反射率,ΔR与蛋白光学偶极密度/等效厚度成正比,旋转盘扫描将反射率图转换为蛋白高度图。丁醛修饰的SiO2通过席夫碱共价固定抗PSA抗体;血清中PSA被捕获后,第二抗PSA抗体形成夹心复合物,进一步增加表面质量。每个抗体点与参考点配对,用抗体点高度增量减去参考点增量扣除非特异结合。PSA浓度越高,捕获及夹心质量越大,反射率变化越大,按Langmuir方程拟合得到浓度。

检测灵敏度

LOD: 4 ng/ml in serum;LOD: 1 ng/ml in 1:4 serum (equivalent to 4 ng/ml in full serum)

效应效果

该传感器通过参考点扣除、席夫碱还原、酪蛋白封闭和0.05% Tween 20抑制血清非特异结合,高度灵敏度为10 pm(点间误差)。0 ng/mL阴性对照响应为0.007±0.0094 nm,1 ng/mL加标响应为0.039±0.0078 nm,差值0.032 nm,标准误差0.012 nm,使用128个斑点降低误差。三个患者血清PSA恢复浓度为30、50和4800 ng/mL,ELISA结果为30、120和2100 ng/mL,整体相关良好;Langmuir拟合KD为15.8 ng/mL。单盘可并行96孔检测,扫描约60 min,分析<10 min,作者认为其可用于临床高背景样品检测。

传感器的构成

  • 基底/换能器:120 nm热氧化SiO2/Si硅片,作为光学干涉换能基底,蛋白层改变反射率
  • 表面功能化层:三乙氧基硅基丁醛(TESBA)硅烷化形成的丁醛修饰层,提供醛基用于抗体共价固定
  • 识别元件:抗PSA多克隆抗体(anti-PSA, G-126-C, Biospecific)点阵,捕获血清中的PSA
  • 参考元件:抗兔IgG(anti-rabbit IgG, R2004, Sigma)参考点,用于局部非特异结合背景扣除
  • 稳定/封闭层:NaBH4还原席夫碱并将残余醛基还原,酪蛋白(casein)封闭非特异结合位点
  • 信号放大元件:第二抗PSA抗体(anti-PSA, G-126-C, 10 μg/mL)形成夹心复合物,增加捕获质量
  • 微区划层:超疏水表面垫/油墨(ultra-hydrophobic surface pads/ink)划分96孔,限制孵育液
  • 读出系统:488 nm氩离子激光、硅基探测器与旋转盘扫描系统,获取反射率图并转换为蛋白厚度

中文摘要

无荧光生物传感器阵列可直接测量蛋白表面密度,无需荧光或酶标记,因而能提供定量且一致的信号。然而,由于非特异性结合,少数无荧光蛋白阵列在高背景样品(如血清)中成功应用。本文测试了基于光学干涉的BioCD作为无荧光生物传感器,并利用96孔抗PSA微阵列在患者血清中检测前列腺特异性抗原(PSA,前列腺癌生物标志物)。通过丁醛表面化学、席夫碱还原、酪蛋白封闭、含Tween 20的孵育缓冲液以及参考点扣除,抑制了血清高蛋白背景引起的非特异结合。该体系在血清中达到4 ng/mL的检出限,并测定了患者血清PSA浓度,结果与ELISA良好相关。在高蛋白背景中实现PSA定量表明,BioCD有望突破无荧光生物传感器在高背景样品中的应用限制,具备临床应用潜力。

英文摘要

Fluorescence-free biosensor arrays for protein detection directly measure the protein surface density, and do not require a fluorophore or enzyme label, and provide quantitative and consistent signals. However, few fluorescence-free biosensor protein arrays have demonstrated successful application in high-background samples, such as serum, due to non-specific binding. We tested the BioCD as a fluorescence-free biosensor based on optical interferometry, and used it to detect prostate specific antigen (PSA, a biomarker of prostate cancer) in patient sera in a 96-well anti-PSA microarray. We have attained a 4 ng/ml detection limit in serum and have measured PSA concentrations in patient sera. The measured concentrations correlated well with enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) results. The measurement of PSA concentrations in high-level protein backgrounds suggests that the BioCD has a potential for clinical applications by removing the restriction of fluorescence-free biosensors from high-background applications.