表面等离子共振(SPR)生物传感器 2010

Silver nanoparticles on a plastic platform for localized surface plasmon resonance biosensing.

Analytical chemistry Fan M, Thompson M, Andrade ML, Brolo AG
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组成图示

Silver nanoparticles on a plastic pla... 传感器构成示意图

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传感器类型

表面等离子共振(SPR)生物传感器

检测对象

11-巯基十一烷酸(11-mercaptoundecanoic acid, MUA,乙醇溶液)、链霉亲和素(streptavidin, SA,溶液)、抗体 HIgG(HIgG,溶液)

检测原理

SNOPS 的换能机制基于 Ag NPs 的局域表面等离子共振(LSPR)。当光激发 Ag NPs 时,其共振峰位置和半峰宽对周围介电环境及颗粒间距敏感。MUA 等硫醇分子吸附到 Ag NPs 表面后驱动颗粒聚集,改变颗粒间电磁耦合和表面形貌,使 LSPR 峰发生位移和展宽,浓度越高变化越大,直至饱和。对于蛋白检测,表面通过 APTMS 或 NHS 化学固定生物素或抗原 RAHIgG;当 SA 或抗体 HIgG 结合后,表面介电层厚度增加,引起 LSPR 红移。结合量随分析物浓度增加,在线性范围内峰位移与浓度相关。该体系无外源标记,直接通过 LSPR 峰位移或颜色变化读出。

检测灵敏度

MUA: 定量限: 500 nM;线性范围: 500 nM–6 µM。SA: 线性范围: 9.5–189.4 nM;LOD: 3.5 nM(190 ng mL-1);摘要报告检测限: ∼9.5 nM。

效应效果

SNOPS 条具有良好样品间重现性,RSD 约 4%。MUA 检测在 500 nM–6 µM 呈线性,低浓度线性范围较电子束光刻 Ag 纳米传感器低一个数量级,且吸附引起的颜色变化可目视观察,适合一次性使用。亲和实验中,RAHIgG 结合产生约 3.5 nm LSPR 位移,EDA 封闭约 0.5 nm,HIgG 结合约 2.5 nm,pH 3 缓冲液可再生。SA 检测线性范围 9.5–189.4 nM,LOD 3.5 nM(190 ng/mL)。未报告实际样品加标回收率或与 ELISA/HPLC/qPCR 的对比。作者认为该平台廉价、柔性、通用且灵敏,可用于蛋白相互作用和生物亲和检测。

传感器的构成

  • 基底:聚对苯二甲酸乙二醇酯(PET)薄膜,作为柔性透明支撑基底
  • 表面活化:等离子体处理活化 PET 表面,提高后续化学接枝反应性
  • 氨基化修饰:1,2-乙二胺(EDA)接枝氨基,使表面可结合金属纳米颗粒
  • 纳米材料修饰:银纳米颗粒(Ag NPs)自组装于 PET 表面,提供 LSPR 光学换能
  • 功能化修饰:(3-氨基丙基)三甲氧基硅烷(APTMS)溶胶凝胶或 3-氨基丙酸(APA)引入氨基/羧基,用于固定生物分子
  • 识别元件:生物素(biotin)或抗原 RAHIgG 固定于表面,特异性捕获链霉亲和素(SA)或抗体 HIgG
  • 封闭剂:1,2-乙二胺(EDA)封闭未反应 NHS 基团

中文摘要

本文报道了一种低成本制备塑料基底局域表面等离子共振(LSPR)生物传感器的方法。作者通过化学修饰常用塑料聚对苯二甲酸乙二醇酯(PET)表面,使其能够高效固定银纳米颗粒(Ag NPs),从而制备银纳米颗粒/塑料传感器(SNOPS)。该传感器条的 LSPR 响应具有良好的样品间重现性。研究考察了传感器条对硫醇分子和蛋白质吸附的监测性能,包括生物亲和相互作用。11-巯基十一烷酸(MUA)吸附的定量限为 500 nM,链霉亲和素(streptavidin)检测的定量限约为 9.5 nM。结果表明,SNOPS 可作为一种廉价、通用且灵敏的 LSPR 生物传感平台,用于小分子硫醇和蛋白质相互作用检测。

英文摘要

A cost-effective fabrication method for the preparation of localized surface plasmon resonance (LSPR) biosensors supported on plastics is described. The silver-nanoparticles-on-plastic sensor (SNOPS) was fabricated by chemically modifying the surface of a common plastic, polyethylene terephthalate (PET) to allow the efficient immobilization of Ag NPs. The LSPR of the SNOPS strip showed good sample-to-sample reproducibility. The analytical performance of the sensor strips for monitoring both thiol and protein adsorption, including bioaffinity, was examined. The limit of quantification to the adsorption of 11-mercaptoundecanoic acid was 500 nM and for the detection of streptavidin was approximately 9.5 nM. SNOPS can then be used as a cheap, versatile, and yet sensitive LSPR biosensor.