其他(可再生电化学-荧光微阵列生物传感器) 2011

A renewable, chemoselective, and quantitative ligand density microarray for the study of biospecific interactions.

Chemical communications (Cambridge, England) Pulsipher A, Yousaf MN
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组成图示

A renewable, chemoselective, and quan... 传感器构成示意图

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传感器类型

其他(可再生电化学-荧光微阵列生物传感器)

检测对象

凝集素(Concanavalin A, ConA;Peanut Agglutinin, PNA)、表面单糖配体(Gal/Glc/Man-ONH2);样品基质:水溶液/微阵列表面

检测原理

该微阵列以金表面H2Q/EG4SH混合SAM为基础,H2Q经电化学氧化为醌(Q)后,与含肟胺基团的单糖发生化学选择性肟键反应,形成表面固定的碳水化合物识别层。固定过程使醌氧化还原峰由约-24/630 mV位移至约283/610 mV,循环伏安法(CV)据此监测配体结合量、反应进程和释放再生。当荧光标记凝集素(ConA或PNA)加入时,其特异性识别葡萄糖或半乳糖配体,结合事件在微点位置产生荧光信号,经荧光显微镜成像读出。荧光强度与分布反映凝集素结合位置与相对量,CV峰位移和强度反映配体密度。EG4SH回填层抑制非特异性黏附,提高背景选择性。该平台未采用酶催化或核酸扩增等信号放大,主要依赖化学选择性固定、电化学氧化还原换能和荧光标记直接读出。

检测灵敏度

原文未报告LOD、线性范围、灵敏度斜率或R^2。

效应效果

作者构建了24×24、点径约100 μm的H2Q/EG4SH SAM微阵列,H2Q/EG4SH比例为1:10,浓度1 mM(EtOH)。Glc-ONH2和Gal-ONH2以90 mM(MeOH)随机固定,荧光标记ConA和PNA(各1 mg/mL,H2O,2 h)结合后,荧光显微镜显示颜色分离、重叠很少,表明凝集素对相应糖配体具有选择性;无糖对照仅见微弱荧光。CV证实固定后氧化还原峰位移,接触角由64.1±1°降至33.3±1°,XPS在398 eV出现N 1s峰,确认肟键形成。平台完成三轮固定-结合-释放-再生循环,显示可重复使用。原文未报告RSD、回收率或与ELISA/HPLC/qPCR的定量对比。

传感器的构成

  • 基底/换能器电极:裸金基底(bare gold substrate),承载自组装单分子层并用于循环伏安法(CV)电化学读出。
  • 自组装单分子层(SAM):氢醌终止烷硫醇(H2Q)与四乙二醇终止烷硫醇(EG4SH)混合SAM,H2Q提供电活性氧化还原位点,EG4SH提供抗非特异黏附背景。
  • 氧化反应层:H2Q电化学氧化生成的醌终止基团(Q),作为与肟胺配体反应的化学选择性位点。
  • 识别元件:含肟胺基团的单糖配体(Gal-ONH2、Glc-ONH2、Man-ONH2),通过肟键(oxime)共价固定,作为碳水化合物识别信号。
  • 封闭/抗污层:EG4SH回填层(EG4SH backfill),覆盖未图案化区域,降低凝集素非特异性吸附。
  • 信号标记物:荧光标记凝集素(fluorescently conjugated ConA、PNA),特异性结合葡萄糖/半乳糖并产生荧光信号。
  • 再生介质:PBS(pH 7)还原条件,用于电化学释放糖和凝集素并再生H2Q终止SAM。
  • 信号读出:循环伏安法(CV)与荧光显微镜(fluorescence microscopy),分别定量配体密度和观察凝集素结合。

中文摘要

本文报道了一种可再生、化学选择性和定量的配体密度微阵列技术,用于研究生物特异性相互作用。作者以裸金为基底,通过自动化微阵列技术将不同比例的氢醌终止烷硫醇(H2Q)与四乙二醇终止烷硫醇(EG4SH)自组装成单分子层(SAM)微点,并用EG4SH回填以抑制非特异性黏附。H2Q经电化学氧化为醌(Q)后,可与含肟胺基团的单糖(半乳糖、葡萄糖、甘露糖肟胺)发生化学选择性肟键连接,从而在表面固定碳水化合物配体。循环伏安法(CV)可实时监测氧化还原峰位移,定量SAM与配体密度,并跟踪反应进程。在还原性PBS条件下施加恒电位可释放糖和凝集素,再生原始H2Q/EG4SH微阵列。荧光标记的刀豆蛋白A(ConA)和花生凝集素(PNA)与相应糖配体特异性结合,经荧光显微镜成像验证了配体-受体识别。该平台可重复使用,适用于生物传感器和生物特异性细胞检测。

英文摘要

Novel renewable microarray technology has been developed to immobilize and release carbohydrates and proteins from self-assembled monolayers (SAMs) of electroactive quinone-terminated alkanethiolates on gold surfaces. This method may be applied to a variety of research fields for use in biosensor technology and the generation of renewable and tailored microarrays for biospecific cell-based assays.