电化学生物传感器 2011

A novel biosensor based on glucose oxidase for activity determination of α - amylase.

Artificial cells, blood substitutes, and immobilization biotechnology Altug C, Mengulluoglu U, Kurt E, Kaya S, Dinckaya E
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组成图示

A novel biosensor based on glucose ox... 传感器构成示意图

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传感器类型

电化学生物传感器

检测对象

α-淀粉酶活性(α-amylase activity);样品基质:含淀粉的磷酸盐缓冲液、面包酵母超声裂解液

检测原理

该传感器采用间接酶级联电化学检测。反应池中,α-淀粉酶催化淀粉水解,生成葡萄糖及糊精;葡萄糖扩散至电极表面的明胶-GOD固定层,被葡萄糖氧化酶氧化为葡萄糖酸内酯,同时消耗溶解氧。由于GOD以O2为共底物,淀粉水解产生的葡萄糖越多,电极附近O2消耗越快,Clark型氧电极记录的溶解氧浓度下降(ΔDO)越大。因此,ΔDO或氧消耗速率与α-淀粉酶活性成正比。高活性下偏离线性主要受水中O2溶解度限制。该方法无需标记抗体或适配体,通过酶促反应将酶活性转化为可测的电化学氧信号。

检测灵敏度

线性范围: 0.66–9.83 U/ml;斜率: 0.2235;R^2 = 0.9972

效应效果

在优化条件下,传感器对α-淀粉酶活性在0.66–9.83 U/ml呈线性,R^2=0.9972。重复性测试中,同一传感器对5.244 U/ml标准液连续测定10次,平均值为5.940±0.184 U/ml,变异系数3.098%。4 ℃储存稳定性较差:第7天响应降至93.4%,第14天未检出活性。实际样品方面,面包酵母超声裂解液中α-淀粉酶活性由传感器测得2.4 U/ml,参考分光光度法为2.5 U/ml,相对差异4.0%。作者认为该传感器制备简单、响应快速、无需昂贵设备,可用于食品、发酵及工业淀粉酶质量控制。

传感器的构成

  • 换能器电极:Clark型溶解氧电极(YSI 5700系列),内置KCl溶液,用于电化学检测溶解氧变化。
  • 气体选择性膜:高灵敏度聚四氟乙烯(Teflon/PTFE)膜,以O形圈固定,允许O2选择性扩散。
  • 表面预处理层:0.5%十二烷基硫酸钠(SDS)磷酸盐缓冲液,降低膜表面张力,便于明胶均匀铺展。
  • 生物活性固定层:5 mg葡萄糖氧化酶(GOD)与5 mg明胶(gelatin)溶于50 mM磷酸盐缓冲液(pH 7.5),涂覆于膜表面并干燥,提供GOD催化位点。
  • 交联固定剂:2.5%戊二醛(glutaraldehyde)浸泡5 min,与GOD和明胶形成席夫碱共价键,增强固定稳定性。
  • 检测体系底物:50 mM磷酸盐缓冲液(pH 6.5)中10 mg/mL淀粉,作为α-淀粉酶水解底物,产生葡萄糖供GOD检测。

中文摘要

本文报道了一种基于葡萄糖氧化酶(GOD)的电化学生物传感器,用于测定α-淀粉酶(α-amylase)活性。该传感器以Clark型溶解氧电极为换能器,将GOD与明胶共固定于电极表面的聚四氟乙烯膜上,并用戊二醛交联。检测时,样品中的α-淀粉酶在含淀粉的磷酸盐缓冲液中水解淀粉产生葡萄糖,葡萄糖进一步被固定化GOD氧化并消耗溶解氧;电极通过监测溶解氧浓度下降来间接反映α-淀粉酶活性。研究优化了GOD用量、明胶用量、戊二醛交联比例、pH、缓冲体系和温度等参数,确定最佳条件为5 mg GOD、5 mg明胶、2.5%戊二醛、磷酸盐缓冲液pH 6.5、40 ℃。在0.66–9.83 U/ml范围内,传感器响应与α-淀粉酶活性呈良好线性关系,并用于面包酵母样品中α-淀粉酶活性的测定。

英文摘要

A glucose oxidase-based biosensor was developed for the determination of α-amylase activity. The determination method is based on monitoring the decrease in dissolved oxygen concentration related to the starch concentration, for which starch gives a reaction with α-amylase. Optimization parameters, including glucose oxidase amount, gelatin amount, and glutaraldehyde percentage for cross-linking, were investigated. The effects of pH, buffer system, and temperature on the biosensor system were also investigated. The biosensor had a linear relation to α-amylase activity and good measurement correlation between 0.66 and 9.83 U/ml. In sample analysis studies, α-amylase activity in baker's yeast was determined by the biosensor.