比色生物传感器 2011

Colorimetric bacteria sensing using a supramolecular enzyme-nanoparticle biosensor.

Journal of the American Chemical Society Miranda OR, Li X, Garcia-Gonzalez L, Zhu ZJ, Yan B, Bunz UH, Rotello VM
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组成图示

Colorimetric bacteria sensing using a... 传感器构成示意图

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传感器类型

比色生物传感器

检测对象

大肠杆菌(Escherichia coli, E. coli XL1)、灰色链霉菌(Streptomyces griseus)、枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilis);样品基质:水溶液及试纸条点样(环境/临床微生物污染样品)

检测原理

该传感器利用静电识别与酶放大实现比色检测。阳离子金纳米颗粒(NP2)表面季铵基团与阴离子β-半乳糖苷酶(β-Gal)静电结合,使酶活性被抑制,体系呈低显色状态。当目标细菌进入体系时,细菌阴离子表面与阳离子纳米颗粒结合,置换并释放β-Gal,使酶活性恢复。恢复活性的β-Gal催化CPRG水解,生成红色产物,颜色强度或595 nm吸光度随细菌浓度增加而增强。试纸条格式中,细菌在GF/B滤纸上快速渗透,NP2-β-Gal复合层限制在表面,约10 min内完成显色,可用肉眼或RGB分析定量。

检测灵敏度

LOD: 1 × 10^2 bacteria/mL(溶液);LOD: 1 × 10^4 bacteria/mL(试纸条);范围: 1 × 10^4–1 × 10^8 bacteria/mL(试纸条)

效应效果

溶液体系中,该方法可重复区分低至100 cells/mL的大肠杆菌XL1,每个样品做三次重复且系列重复三次;对灰色链霉菌和枯草芽孢杆菌也观察到类似Vmax变化,表明体系具有通用性。试纸条格式中,1×10^4–1×10^8 bacteria/mL范围内可见明显颜色差异,RGB分析至少重复三次,可区分1×10^4 bacteria/mL。对照实验显示中性NPTEG和阴离子NPCO2不抑制β-Gal,而80 nM阳离子NP2可完全抑制,说明静电结合是关键。实验过程中未观察到明显沉淀或颜色变化,表明体系稳定,适合现场快速检测。

传感器的构成

  • 试纸条基底:GF/B无粘合剂微纤维滤纸(GF/B filter paper),提供高湿强度、高负载和快速响应
  • 纳米材料层:阳离子金纳米颗粒(cationic AuNPs, NP2),表面为季铵基团,用于静电结合酶与细菌
  • 识别界面:阳离子季铵表面(quaternary ammonium headgroups),与细菌阴离子表面静电结合
  • 信号酶:β-半乳糖苷酶(β-Gal),阴离子酶,被NP2抑制并在细菌结合后释放恢复活性
  • 显色底物:氯酚红β-D-半乳糖苷(CPRG),被β-Gal催化水解生成红色产物(λmax 595 nm)
  • 反应介质:5 mM磷酸盐缓冲液(pH 7.4),维持β-Gal活性与静电结合条件
  • 信号读出:肉眼比色、LCD相机RGB分析或吸光度动力学(Vmax),用于定量细菌浓度

中文摘要

病原菌的快速、高灵敏检测对环境监测和临床诊断至关重要。本文报道了一种基于酶-纳米颗粒偶联体系的比色细菌传感方法,用于检测微生物污染。该体系采用表面修饰季铵基团的阳离子金纳米颗粒(AuNPs),通过静电作用结合阴离子β-半乳糖苷酶(β-Gal),从而抑制其酶活性。当目标细菌与纳米颗粒结合时,细菌阴离子表面置换并释放β-Gal,使酶活性恢复;恢复活性的β-Gal催化显色底物氯酚红β-D-半乳糖苷(CPRG)水解,由淡黄色变为红色,实现酶放大的比色读出。该方法在水溶液中可将细菌定量至1×10^2个/mL,在便于现场使用的试纸条格式中可达到1×10^4个/mL的视觉检测水平。

英文摘要

Rapid and sensitive detection of pathogens is a key requirement for both environmental and clinical settings. We report here a colorimetric enzyme-nanoparticle conjugate system for detection of microbial contamination. In this approach, cationic gold nanoparticles (NPs) featuring quaternary amine headgroups are electrostatically bound to an enzyme [β-galactosidase (β-Gal)], inhibiting enzyme activity. Analyte bacteria bind to the NP, which releases the β-Gal and restores its activity, providing an enzyme-amplified colorimetric readout of the binding event. Using this strategy, we have been able to quantify bacteria at concentrations of 1 × 10(2) bacteria/mL in solution and 1 × 10(4) bacteria/mL in a field-friendly test strip format.