电化学生物传感器 2011

Construction of a potentiometric glutamate biosensor for determination of glutamate in some real samples.

Artificial cells, blood substitutes, and immobilization biotechnology Y Lmaz D, Karaku E
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组成图示

Construction of a potentiometric glut... 传感器构成示意图

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传感器类型

电化学生物传感器

检测对象

谷氨酸(L-glutamate / glutamate);样品基质:鸡精(chicken bullion)、健康人血清(healthy human serum)、商业多效氨基酸混合物(commercial multipower amino acid mixture)

检测原理

该传感器以谷氨酸氧化酶(GOD)为识别元件,以含nonactin载体的PVC铵离子选择性膜为换能器。谷氨酸进入膜表面酶层后,被GOD催化氧化脱氨:L-glutamate + O2 + H2O → α-ketoglutarate + H2O2 + NH4+。生成的NH4+被nonactin选择性识别并在PVC膜界面发生离子交换/分配,引起膜电位变化。电位计以Ag/AgCl参比电极为基准记录mV信号,电位随谷氨酸浓度升高而改变,在10^-1–10^-3 M范围内呈近Nernst线性响应。该体系无额外化学放大,主要依靠酶催化将谷氨酸转化为可电位检测的铵离子;酶动力学常数Km=162 mM、Vmax=21.1 mV/p[glutamate]。

检测灵敏度

线性范围: 1.0×10^-1–1.0×10^-3 M(谷氨酸,结果部分);10^-1–10^-4 M(谷氨酸,结论部分);灵敏度斜率: 45.23 ± 0.58 mV/p[glutamate];R^2 = 0.9847;铵离子响应: 1.0×10^-1–1.0×10^-5 M,斜率: 53.18 ± 1.2 mV/p[NH4+],R^2 = 0.9964

效应效果

该传感器对Na+、K+、Ca2+选择性系数分别为3.8×10^-2、2.4×10^-1、1.3×10^-3,K+干扰最大;对多数氨基酸和抗坏血酸干扰低,谷氨酰胺相对响应41%。响应时间1–2 min,最佳搅拌250 rpm。45 d存储中15 d后活性损失12%,至45 d无进一步下降;同日10次测量最低斜率为最大值85%。实际样品标准加入法:鸡精63.4 mg/10 g(报道10 g/kg),氨基酸混合物1.38 mg/100 μL(报道1.48),人血清6.5×10^-4 mg/100 μL(报道6.6×10^-4),与文献值吻合,作者认为可用于生物和食品样品快速测定。

传感器的构成

  • 基底/换能器电极:PVC铵离子选择性膜电极(含palmitic acid棕榈酸和nonactin非精胺),将NH4+浓度转换为电位信号
  • 内充液:1.0×10^-2 M NH4Cl(pH 7.0),提供稳定内参比电位
  • 化学固定剂/修饰层:EDC(1-ethyl-3-(3-dimethylaminopropyl) carbodiimide)与glutaraldehyde(戊二醛),用于GOD在膜表面的化学交联固定
  • 识别元件:谷氨酸氧化酶(GOD, E.C.1.4.3.11),催化谷氨酸氧化脱氨生成NH4+
  • 工作介质:10 mM TRIS缓冲液(pH 8.2),维持GOD活性并作为电位测量介质
  • 参比电极:Ag/AgCl双盐桥参比电极,与指示电极组成测量回路
  • 信号读出:ORION 4 Star pH-ion meter,记录电位变化

中文摘要

本研究构建了一种基于铵离子选择性聚氯乙烯(PVC)膜电极的电位型谷氨酸生物传感器。将谷氨酸氧化酶(GOD)通过化学方法固定于含棕榈酸和非精胺(nonactin)的PVC铵离子选择性膜表面。谷氨酸在GOD催化下发生氧化脱氨反应,生成α-酮戊二酸、过氧化氢和铵离子;产生的铵离子由膜电极以电位法进行测定。作者系统考察了缓冲液浓度、pH、响应时间、线性工作范围、酶动力学常数(Km和Vmax)及干扰效应等最佳工作条件。结果表明,该传感器对谷氨酸具有近能斯特响应,并可在鸡汤、健康人血清和商业多效氨基酸混合物等实际样品中成功测定谷氨酸,结果与文献报道值吻合良好。

英文摘要

The potentiometric glutamate biosensor based on ammonium-selective poly(vinylchloride) (PVC) membrane electrode was constructed by chemically immobilizing glutamate oxidase. Ammonium ions produced after an enzymatic reaction were determined potentiometrically. We determined the optimum working conditions of the biosensor such as buffer concentration, buffer pH, lifetime, response time, linear working range, kinetic constants (K(m) and V(max)) of glutamate oxidase enzyme used for biosensor construction values, and other response characteristics. Additionally, glutamate assay in some real samples such as chicken bullion, healthy human serum, and commercial multipower amino acid mixture were also successfully carried out. The results showed good agreement with previously reported values.