比色生物传感器 2012

Functionalization of oxidases with peroxidase activity creates oxiperoxidases: a new breed of hybrid enzyme capable of cascade chemistry.

Chembiochem : a European journal of chemical biology Winter RT, van den Berg TE, Colpa DI, van Bloois E, Fraaije MW
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组成图示

Functionalization of oxidases with pe... 传感器构成示意图

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传感器类型

比色生物传感器

检测对象

木糖醇(xylitol);样品基质为磷酸钾缓冲液溶液及表达AldO-MP的大肠杆菌全细胞/周质提取物。

检测原理

AldO的FAD活性中心特异性结合并氧化木糖醇,以O2为电子受体,生成氧化产物和H2O2。由于MP292微过氧化物酶与AldO共价融合在同一蛋白骨架,H2O2可在分子内或近邻传递至血红素活性中心。血红素在H2O2作用下形成活性氧化态,催化DCHBS与AAP(或DMB)偶联显色,生成在515 nm(或460 nm)有特征吸收的有色产物。木糖醇浓度越高,氧化酶产生H2O2越多,过氧化物酶催化显色底物越多,吸光度越大,从而比色定量。该设计无需外加HRP或独立过氧化物酶,属于单组分酶级联检测。

检测灵敏度

可靠检测浓度: 2.3 mgL−1 (15 mM);酶用量: 20 nM AldO-MP

效应效果

该融合酶在大肠杆菌周质中表达纯化,AldO-MP完全黄素化与血红素化,FAD/血红素与蛋白呈1:1;AldO-HB1仅15%含血红素。动力学显示氧化酶活性基本保留,xylitol Km 0.29/0.35 mM,kcat 9.1/12.2 s−1,接近野生型13.0 s−1;过氧化物酶以DMB为底物时H2O2 Km 12±5 mM,kcat 9.1±2.2 s−1,pH 8.5最优,pH 7.5保留约60%活性。比色法仅用20 nM AldO-MP即可可靠检测2.3 mgL−1(15 mM)木糖醇,并可在表达菌全细胞中检测氧化酶活性。实验重复三次,标准偏差约5%;过氧化物酶活性随时间缓慢衰减。作者认为该单组分杂交酶可用于级联反应和新型生物传感器。

传感器的构成

  • 识别/催化层:AldO(共价FAD黄素蛋白氧化酶),特异性氧化木糖醇并产生H2O2。
  • 信号转换层:MP292微过氧化物酶(CXXCH血红素结合肽,共价血红素),催化H2O2与显色底物反应。
  • 融合蛋白骨架:Tat-Strep-AldO-MP,Tat信号序列介导大肠杆菌周质分泌,Strep-tag用于Strep-Tactin亲和纯化。
  • 显色底物:DCHBS与AAP(或DMB),在过氧化物酶/H2O2作用下生成有色产物。
  • 反应介质:磷酸钾缓冲液(50 mM,pH 7.5),用于溶液相比色检测。

中文摘要

来自链霉菌 Streptomyces coelicolor A3(2) 的共价黄素蛋白醛糖醇氧化酶 AldO,通过与微过氧化物酶 MP292 融合而获得额外催化功能。该融合蛋白在大肠杆菌周质中表达并纯化后,得到一种合成双功能酶,既完全共价黄素化又完全共价血红素化,被称为氧化过氧化物酶。表征表明,氧化酶与过氧化物酶两种功能均保持活性,且该构建体可作为单组分木糖醇生物传感器。为缩小氧化酶-过氧化物酶融合蛋白尺寸,作者将 AldO 天然序列的部分区段替换为细菌细胞色素 c 的 CXXCH 血红素结合基序;仅突变 AldO 蛋白中的三个残基,即成功构建了具有功能的氧化酶-过氧化物酶杂交酶。该工作首次将氧化酶与过氧化物酶整合到单一蛋白骨架中,展示了人工酶级联催化和新型生物传感器设计潜力。

英文摘要

The covalent flavoprotein alditol oxidase (AldO) from Streptomyces coelicolor A3(2) was endowed with an extra catalytic functionality by fusing it to a microperoxidase. Purification of the construct resulted in the isolation of a synthetic bifunctional enzyme that was both fully covalently flavinylated and heminylated: an oxiperoxidase. Characterization revealed that both oxidase and peroxidase functionalities were active, with the construct functioning as a single-component xylitol biosensor. In an attempt to reduce the size of the oxidase-peroxidase fusion, we replaced portions of the native AldO sequence with the bacterial cytochrome c CXXCH heme-binding motif. By mutating only three residues of the AldO protein we were able to create a functional oxidase-peroxidase hybrid.