电化学生物传感器 2012

Wireless biosensor system for real-time L-lactic acid monitoring in fish.

Sensors (Basel, Switzerland) Hibi K, Hatanaka K, Takase M, Ren H, Endo H
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组成图示

Wireless biosensor system for real-ti... 传感器构成示意图

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传感器类型

电化学生物传感器

检测对象

L-乳酸(L-lactic acid / L-lactate);样品基质:尼罗罗非鱼眼球间质巩膜液(EISF),并以血液(blood)作对照校准

检测原理

该传感器为酶促安培型电化学生物传感器。固定在工作电极表面的乳酸氧化酶(LOX)特异性催化 L-乳酸与氧气反应,生成丙酮酸和过氧化氢(H2O2)。生成的 H2O2 扩散至 Pt-Ir 工作电极表面,在 +650 mV(vs. Ag/AgCl)恒电位下发生电催化氧化,释放电子并形成安培电流。由于 H2O2 生成量与 L-乳酸浓度成正比,输出电流随 L-乳酸浓度升高而线性增大。Nafion 修饰层用于限制间质液中杂质干扰,BSA 与戊二醛交联固定 LOX 以维持酶活性。无线电位计采集电流信号,经单点校准将电流转换为 EISF 中 L-乳酸浓度,并依据血乳酸与 EISF 乳酸的相关关系估算血液 L-乳酸水平。

检测灵敏度

LOD: 0.04 mg·dL−1;线性范围: 0.04–6.0 mg·dL−1;斜率: 6.0354(y = 6.0354x − 9.428);R = 0.9944(结果)/0.9959(摘要);EISF 线性范围: 1.7–5.0 mg·dL−1,R = 0.9944

效应效果

该传感器在 PBS 中对 L-乳酸呈线性响应,响应稳定约 2 min。EISF 中线性范围 1.7–5.0 mg·dL−1,R=0.9944。三只手工传感器重复性 RSD 为 7.86±0.53%(n=25),作者认为批间差异来自手工制作,可用单传感器校准克服。pH 6.0–8.5 电流随 pH 升高增大,pH>8.5 下降;温度 10–40 °C 电流随温度升高增大,>40 °C 下降,适合 24–28 °C 养殖水温。无线系统在自由游动尼罗罗非鱼中连续监测超过 60 h;2-苯氧基乙醇应激后血乳酸升至约 50 mg·dL−1,EISF 乳酸升至约 20 mg·dL−1,趋势与血液一致。未报告选择性、回收率及与 ELISA 等方法的对比;作者认为其可用于水产养殖鱼类应激与健康监测。

传感器的构成

  • 工作电极:Pt-Ir 丝(φ0.178 mm,Teflon 包覆,暴露 2.0 mm 金属)作为安培换能器,在 +650 mV 下检测 H2O2 氧化电流
  • 绝缘与引线:Teflon 层包覆 Pt-Ir 丝,Cu 线缠绕作为引线,限制电流仅来自暴露传感腔
  • 参比/对电极:Ag/AgCl 糊涂覆于 Teflon 包覆的 Cu 线表面,提供稳定参比电位并构成双极传感结构
  • 修饰层:5% Nafion 分散液涂覆于工作电极表面并风干,形成限域层,减少 EISF 中杂质干扰
  • 识别元件:乳酸氧化酶(LOX)固定于 Nafion 层上,催化 L-乳酸氧化生成 H2O2
  • 交联/载体层:BSA 与戊二醛(glutaraldehyde)将 LOX 交联固定,提高酶层稳定性
  • 封装与固定:环氧树脂密封针尖,医用粘合剂 Aronalpha-A 固定于鱼体巩膜,实现植入式无线监测

中文摘要

本研究开发了一种用于连续监测鱼类 L-乳酸浓度的无线生物传感器系统。鱼类血液 L-乳酸水平是反映应激状态的重要指标。该生物传感器以直径 0.178 mm 的 Pt-Ir 丝作为工作电极,Ag/AgCl 糊作为参比电极,并通过戊二醛将乳酸氧化酶固定于工作电极表面。传感器校准曲线在 0.04–6.0 mg·dL−1 范围内与 L-乳酸浓度呈良好线性关系(R=0.9959)。作者选择眼球间质巩膜液(EISF)作为传感器植入部位,发现血 L-乳酸水平与 EISF L-乳酸水平在 3–13 mg·dL−1 范围内密切相关(R=0.8173,n=26)。随后利用该传感器系统在鱼缸中自由游动的鱼体内进行无线 L-乳酸监测,传感器响应可稳定保持 60 h 以上。结果表明,该生物传感器为实时、便捷地监测鱼类 L-乳酸水平提供了一种快速方法。

英文摘要

We have developed a wireless biosensor system to continuously monitor L-lactic acid concentrations in fish. The blood L-lactic acid level of fish is a barometer of stress. The biosensor comprised Pt-Ir wire (φ0.178 mm) as the working electrode and Ag/AgCl paste as the reference electrode. Lactate oxidase was immobilized on the working electrode using glutaraldehyde. The sensor calibration was linear and good correlated with L-lactic acid levels (R = 0.9959) in the range of 0.04 to 6.0 mg · dL(-1). We used the eyeball interstitial sclera fluid (EISF) as the site of sensor implantation. The blood L-lactic acid levels correlated closely with the EISF L-lactic acid levels in the range of 3 to 13 mg · dL(-1) (R = 0.8173, n = 26). Wireless monitoring of L-lactic acid was performed using the sensor system in free-swimming fish in an aquarium. The sensor response was stable for over 60 h. Thus, our biosensor provided a rapid and convenient method for real-time monitoring of L-lactic acid levels in fish.