电化学生物传感器 2012

Immobilization of anti-aflatoxin B1 antibody by UV polymerization of aniline and aflatoxin B1 detection via electrochemical impedance spectroscopy.

Artificial cells, blood substitutes, and immobilization biotechnology Dinçkaya E, Kinik Ö, Sezgintürk MK, Altuğ Ç, Akkoca A
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组成图示

Immobilization of anti-aflatoxin B1 a... 传感器构成示意图

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传感器类型

电化学生物传感器

检测对象

黄曲霉毒素B1(Aflatoxin B1, AFB1);样品基质:花生食品样品及标准缓冲液

检测原理

该传感器以金电极为换能器,苯胺在紫外光下聚合形成聚苯胺层,并将抗黄曲霉毒素B1抗体物理包埋其中。当样品中的黄曲霉毒素B1与固定抗体特异性结合后,电极表面生物分子层厚度与界面性质发生变化,阻碍溶液中铁氰化钾/亚铁氰化钾氧化还原探针向电极表面接近和电子转移。电化学阻抗谱中,电荷转移阻抗(Rct)随黄曲霉毒素B1浓度增加而增大,Nyquist图半圆直径变大。通过比较结合前后阻抗差值ΔRct建立校准曲线,在1–20 ng/mL范围内与浓度呈线性关系。该过程无需酶标或荧光标记,属于无标记阻抗免疫传感。

检测灵敏度

LOD: 1 ng/mL;线性范围: 1–20 ng/mL;斜率: 2893.3 Ω/(ng/mL);R^2 = 0.9939

效应效果

该传感器在6 ng/mL标准样品中重复测定5次,平均值为6 ng/mL,标准差0.25 ng/mL,相对标准偏差4.2%,表明重复性良好。连续制备5个传感器,校准曲线相关系数为0.893–0.996,显示制备重现性可接受。对花生食品样品进行0.2 ng/mL黄曲霉毒素B1加标实验,测得0.21 ng/mL,回收率105%,相对差5%,说明可用于实际食品样品检测。选择性基于抗体-抗原特异性,但原文未报告交叉反应或抗干扰数据。作者认为相比TLC、HPLC和ELISA等方法,该阻抗免疫传感器制备简单,但检出限为1 ng/mL且需30 min孵育,对痕量样品可能需要预浓缩。

传感器的构成

  • 工作电极基底:金电极(Au electrode),作为换能器,经氧化铝抛光和Piranha(H2O2/H2SO4)清洗后用于固定识别层。
  • 修饰层:苯胺(aniline)在319 nm紫外光下聚合形成聚苯胺(polyaniline, PANI)薄膜,用于物理包埋抗体。
  • 识别元件:抗黄曲霉毒素B1抗体(anti-aflatoxin B1 antibody),固定于聚苯胺层中,特异性识别黄曲霉毒素B1。
  • 氧化还原探针:铁氰化钾/亚铁氰化钾(K3[Fe(CN)6]/K4[Fe(CN)6],Fe(CN)6^3-/4-)加0.1 M KCl,用于电化学阻抗谱监测电荷转移阻抗。
  • 参比与辅助电极:Ag/AgCl参比电极和铂(Pt)辅助电极,构成三电极电化学体系。
  • 孵育介质:50 mM pH 7磷酸盐缓冲液(phosphate buffer),用于抗体与黄曲霉毒素B1孵育。
  • 清洗/封闭:乙醇与超纯水,用于去除未聚合苯胺单体和非特异性吸附的黄曲霉毒素B1。

中文摘要

本研究考察了利用苯胺紫外聚合固定抗黄曲霉毒素B1抗体,并基于所得生物传感器通过阻抗法测定黄曲霉毒素B1的可行性。将抗黄曲霉毒素B1抗体与苯胺混合后滴加至金电极表面,在319 nm紫外光照射下使苯胺聚合,从而将抗体物理包埋于聚苯胺层中。该传感器基于抗黄曲霉毒素B1抗体与黄曲霉毒素B1之间的特异性识别,采用电化学阻抗谱监测识别事件引起的界面电荷转移阻抗变化。以铁氰化钾/亚铁氰化钾为氧化还原探针,在1–20 ng/mL范围内获得线性校准曲线,检出限为1 ng/mL。最后将该传感器应用于真实花生食品样品中黄曲霉毒素B1的检测,验证了其在食品检测中的应用潜力。

英文摘要

In the study, we investigated the practicality of the UV polymerization of aniline for anti-aflatoxin B1 antibody immobilization, and utilization of the resulting biosensor in the impedimetric determination of aflatoxin B1. The anti-aflatoxin B 1 antibody was physically immobilized on gold electrodes by UV polymerization of aniline at a fixed wavelength. The biosensor was based on specific interaction anti-aflatoxin B1 - aflatoxin B1 recognition and investigation of this recognition event by electrochemical impedance spectroscopy. A calibration curve was obtained in a linear detection range 1-20 ng/mL aflatoxin B1. Finally, the biosensor was applied to analysis of a real food sample.