电化学生物传感器 2008

Biosensing approach for glutathione detection using glutathione reductase and sulfhydryl oxidase bienzymatic system.

Talanta Timur S, Odaci D, Dincer A, Zihnioglu F, Telefoncu A
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组成图示

Biosensing approach for glutathione d... 传感器构成示意图

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传感器类型

电化学生物传感器

检测对象

氧化型谷胱甘肽(GSSG)、还原型谷胱甘肽(GSH);样品基质:磷酸盐缓冲液标准溶液及人血样品(经 HPLC 分离后)

检测原理

该传感器采用双酶级联反应。氧化型谷胱甘肽(GSSG)先被谷胱甘肽还原酶(GR)催化还原为还原型谷胱甘肽(GSH),同时消耗 NADPH 并生成 NADP+;生成的 GSH 再被硫醇氧化酶(SOX)催化氧化,消耗氧气(O2)并生成过氧化氢。在 −0.7 V 工作电位下,石墨电极通过计时电流法监测 O2 消耗引起的电流密度变化。由于 1 分子 GSSG 可生成 2 分子 GSH,酶级联对信号产生一定放大;谷胱甘肽浓度越高,O2 消耗越多,电流响应越大,从而实现定量检测。

检测灵敏度

线性范围: 0.5–2.0 mM(GSSG);0.2–1.0 mM(GSH);HPLC-生物传感器: 0.5–2.0 mM(GSSG)、0.1–0.8 mM(GSH)

效应效果

该传感器对 GSH、GSSG 和 NADPH 的空白测量未观察到非酶干扰。重复性方面,1 mM GSSG 连续 5 次测定为 1.082 ± 0.011 mM,变异系数 1.0%;0.4 mM GSH 为 0.422 ± 0.008 mM,变异系数 1.9%。稳定性方面,工作条件下 3 h 后活性下降 11%,期间完成约 20 次测量。人血样品经 HPLC 分离后采用标准加入法,生物传感器对 GSH 和 GSSG 的加标回收率分别为 105% 和 100%;DAD 参考法回收率为 94% 和 97%。结果表明该双酶电极无需衍生化即可同时检测两种谷胱甘肽,可作为 HPLC 电化学检测器用于血液样品分析。

传感器的构成

  • 基底电极:光谱石墨棒(spectrographic graphite rods),抛光后作为工作电极。
  • 固定化膜:壳聚糖膜(chitosan membrane),用于共固定 GR 和 SOX。
  • 识别催化元件:谷胱甘肽还原酶(GR)与硫醇氧化酶(SOX),分别催化 GSSG 还原和 GSH 氧化。
  • 交联稳定剂:戊二醛(glutaraldehyde),处理酶膜以固定酶并提高稳定性。
  • 工作介质/辅因子:50 mM 磷酸盐缓冲液(pH 6.5)含 2 μM NADPH,提供反应环境和还原当量。
  • 电极与读出:Ag/AgCl 参比电极、Pt 对电极和 Voltalab PGP201 电化学工作站,计时电流法监测 O2 消耗电流。

中文摘要

本研究将谷胱甘肽还原酶(GR)和硫醇氧化酶(SOX)共固定于壳聚糖膜中,并将该膜整合到光谱石墨棒表面,构建了一种用于检测谷胱甘肽的电化学生物传感器。传感器工作原理基于监测酶促反应过程中氧气的消耗量,该消耗量与谷胱甘肽浓度相关。在最优工作条件下,当体系中存在 2 μM 烟酰胺腺嘌呤二核苷酸磷酸(NADPH)时,氧化型谷胱甘肽(GSSG)在 0.5–2.0 mM、还原型谷胱甘肽(GSH)在 0.2–1.0 mM 范围内,传感器响应与浓度呈线性关系。此外,作者采用高效液相色谱(HPLC)分离还原型和氧化型谷胱甘肽,并考察双酶系统作为电化学检测器用于分析这些化合物。所有数据均以生物传感器与二极管阵列检测器(DAD)两种系统的比较形式给出。

英文摘要

Chitosan membrane with glutathione reductase and sulfhydryl oxidase (SOX) was subsequently integrated onto the surface of spectrographic graphite rods for obtaining a glutathione biosensor. The working principle was based on the monitoring of O(2) consumption that correlates the concentration of glutathione during the enzymatic reaction. A linear relationship between sensor response and concentration was obtained between 0.5 and 2.0 mM for oxidized glutathione (GSSG), and 0.2-1.0 mM for reduced glutathione (GSH) in the presence of 2 microM nicotinamide adenine dinucleotide phosphate (NADPH) under the optimum working conditions. Also, reduced/oxidized glutathione were separated by HPLC and utility of bienzymatic system was investigated as an electrochemical detector for the analysis of these compounds. All data were given as a comparison of two systems: biosensor and diode array detector (DAD).

关键词

谷胱甘肽生物传感器谷胱甘肽还原酶硫醇氧化酶还原型谷胱甘肽氧化型谷胱甘肽电化学检测